实验方法实验工具变量说明数据收集实验步骤
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一.制胶
1. 安装制胶装置
步骤1. 玻璃板及制胶装置用前清洗干净,晾干。
步骤2. 保证两块玻璃板下缘水平且均无豁口,安装玻璃板(内长外短),用手压实玻璃板及垂直槽制胶架。
步骤3. 倾斜垂直槽制胶架子装入垂直槽制胶固定架(为防止胶片变形漏液体,不要过分用力下压),卡好。
2. 配制分离胶
注:加完TEMED后立即混匀铺板;加入>75%玻璃板高度的分离胶,可适当高,以防漏液。
3. 铺板,水封(ddH2O),最好用无水乙醇铺满。
4. 胶凝后(可以观察到明显的分界线或剩余分离胶已凝),倒掉无水乙醇,用ddH2O轻轻冲洗,可直立胶板倒掉多余的水。
5. 配制浓缩胶(2板约3ml)
6. 上胶并插梳子(水平迅速,不能有气泡),先弃无水乙醇,再水洗后弃水。
7. 浓缩胶凝固后从制胶架上拆下,冲洗干净漏出胶体,完全浸入ddH2O 4℃冰箱过夜。(胶可现做现用,但是放置时间越长,跑电泳效果越好)
二.配液
配制电泳液,转膜液,TPST及5%脱脂奶粉(跑电泳前一天完成配胶及实验相关液体配制)
三.跑电泳
步骤1. 安装电泳槽,注意使用主板(有两个个金属电极),玻璃板(检查玻璃板是否干净)安装梳子对梳子,不要将梳子压在胶片上(否则影响拔梳子)。
步骤2. 放入冰袋,倒入电泳液(先倒电泳槽中间,由中间流向四周,中间电泳液必须使用新液)。
步骤3. 取出蛋白样品,上样前离心。
步骤4. 拔梳子(水平缓慢拔起),用枪头吸吹(电泳液,枪头不要插入两个玻璃板之间,贴长板吹,缓慢温柔)各槽去除多余胶。
步骤5. 上样,先上marker,两侧上marker,每孔6ul。加样时注意正反,不要加入气泡。
每孔最多加30ul(通常上样量为40ug 20ug,如需加30ul,需要先加15ul沉淀一下,再加15ul)。
步骤6. 装电泳槽盖(红对红,黑对黑),80V,到达分离胶时120V,60V恒压(注意是否有电流,通常电流为20多mA,功率为1-2W)将样品压入分离胶(通常起始分离胶与样品距离0.5cm为最佳)。
步骤7. 调整电压至100V,继续电泳至完成。
四.转膜
步骤1. 切胶并转移至电转液中。
步骤2. 按如下顺序安装转膜槽样品夹板
黑板(最下方)→海绵垫→滤纸→胶→PVDF膜(甲醇提前浸泡激活,30s)→滤纸→海绵垫→白板→上扣(逐层用滚轮压实)
步骤3. 电转槽安装(放入冰中,冰袋至于槽中,夹板与转膜槽黑对黑,红对红),加入电转液,液面超过PVDF膜。恒流
电转条件:
步骤4. 电转完毕后,剪膜,注意正反面。
五.免疫反应部分
步骤1. TPST(1×)清洗5-10min。
步骤2. 5%脱脂牛奶封闭(脱脂奶粉提前配好,防治封闭不均匀),室温2小时(摇床)或4℃过夜。磷酸化蛋白用5%BSA封闭。
步骤3. TPST(1×)洗膜3次,每次10min
步骤4. 一抗4℃封闭过夜(最佳)or 室温摇床2h。GAPDH工作浓度(1:5000)。一抗用5%脱脂牛奶配制(磷酸化蛋白用5%BSA配制)。
步骤5. 过夜后一抗摇0.5小时(一抗回收储存于-20℃),TPST(1×)洗膜3次,每次10min
步骤6. 二抗室温摇床封闭2h(5%脱脂牛奶配制)。工作浓度(1:5000)
步骤7. TPST(1×)洗膜3次,每次10min(打开ECL显色仪预冷,更换好CL板,打开软件)
步骤8. PVDF晾干备用
步骤9. 配制ECL显色液(A液:B液为1:1,避光,一张膜500ul),配完后30min内使用。
六.ECL发光
备注: 因为GAPDH 作为管家基因在同种细胞或者组织中的蛋白质表达量一般是恒定的,因此在使用GAPDH内参抗体时,将每个样品测得的目的蛋白含量与本样品的GAPDH含量相除,得到每个样品目的蛋白的相对含量,然后才进行样品与样品之间的比较。